Keywords: Escherichia coli, antimicrobial resistance, reservoir, public health, wild birds.
Introducción
La presencia de aves silvestres, especialmente
palomas, en áreas urbanas ha suscitado una
creciente preocupación por su impacto en la
salud pública. Estas aves son capaces de recorrer
grandes distancias dentro del entorno urbano, lo
que facilita la diseminación de patógenos,
muchos de los cuales tienen relevancia clínica y
epidemiológica
1
. Debido a su contacto cercano
con los humanos, en particular con niños en
espacios recreativos como plazas, las palomas
pueden actuar como vectores de patógenos
zoonóticos.
Además, las aves silvestres son ampliamente
reconocidas como portadoras de bacterias y
genes de resistencia a los antimicrobianos.
Aquellas que habitan cerca de entornos humanos
pueden adquirir bacterias multirresistentes a
partir de fuentes antropogénicas, como aguas
residuales urbanas y vertederos, actuando, así
como centinelas que reflejan la actividad
humana
2
. Por lo tanto, estas aves, que no están
expuestas directamente a agentes antibióticos,
pueden infectarse con bacterias resistentes a
través del contacto con un entorno contaminado
3
.
La aparición de bacterias resistentes a los
antibióticos se ha convertido en una
preocupación global en el ámbito de la salud
pública. En los últimos años, se han identificado
nuevos mecanismos de resistencia que afectan a
diversas clases de antimicrobianos, y estos están
propagándose a nivel mundial
4
. Este creciente
desafío exige una comprensión detallada de los
patrones de resistencia, lo cual es fundamental
para desarrollar estrategias efectivas de control y
mitigación
3
.
En este contexto, Escherichia coli presente en las
heces de las aves, es una bacteria valiosa para
estudiar, no solo porque puede portar y transferir
genes de resistencia, sino también porque posee
variantes patogénicas que afectan tanto a las
personas como a los animales. Por lo tanto, el
objetivo de este trabajo fue aislar, identificar y
evaluar el perfil de resistencia de Escherichia
coli en materia fecal de aves silvestres en plazas
recreativas infantiles de la provincia de Córdoba.
Material y método
Se recolectaron 13 muestras de materia fecal de
aves silvestres en plazas recreativas del área de
influencia de la ciudad de Córdoba, Argentina,
utilizando un muestreo totalmente aleatorizado
(Tabla 1). Las muestras se almacenaron en
frascos estériles de 50 ml, se identificaron y se
refrigeraron a 4 °C hasta su análisis.
Tabla 1. Plazas muestreadas de la provincia de
Córdoba, Argentina.
Antes del análisis, las muestras se clasificaron
según su consistencia en blandas o duras,
evaluando su porción sólida, líquida y su forma
(tubular bien formada o amorfa), con el fin de
determinar si las heces blandas podrían presentar
una mayor carga bacteriana que favoreciera el
aislamiento.
Cada muestra de materia fecal se sembró en agar
Eosina y Azul de Metileno (EMB) y se incubó a
37 °C durante 24 horas. A partir del crecimiento
bacteriano observable, se seleccionó una colonia
característica de color verde metálico,
correspondiente a Escherichia coli, de cada
muestra. Posteriormente, las colonias típicas
fueron sometidas a caracterización fenotípica
mediante pruebas bioquímicas convencionales.
Una vez confirmados los resultados de estas
pruebas, las cepas se crioconservaron a -80 °C.
Las cepas fueron expuestas a 10 antimicrobianos
de importancia tanto en salud pública como
animal5. Se utilizó la prueba de microdilución en
caldo
6
para estimar las concentraciones mínimas
inhibitorias de amoxicilina (AMX), ceftiofur
(CFT), enrofloxacina (ENR), estreptomicina
(EST), florfenicol (FLF), gentamicina (GEN),
tetraciclina (TET) y trimetoprim-sulfametoxazol
(TMT/SUL). Como control se empleó
Escherichia coli ATCC 25922 y para la
valoración de resistencia, se consideraron los
puntos de corte epidemiológicos (ECOFFs)
propuestos por EUCAST 2023
7
.
La técnica de PCR se empleó para la
determinación genotípica, permitiendo la
identificación de los genes eaeA, característicos
de Escherichia coli enteropatógena. Para extraer
el ADN, cada las cepas fueron suspendidas en un
buffer 10x, sometida a lisis en un baño seco a
100ºC durante 10 minutos, seguido de una
centrifugación a 1500 g durante 15 minutos a 4ºC
para obtener el sobrenadante de cada muestra.
Posteriormente, se evaluó la concentración y
pureza del ADN colocando 1 µl en el